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Parasiteninfektionen

Von

Richard D. Pearson

, MD, University of Virginia School of Medicine

Inhalt zuletzt geändert Feb 2017
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Quellen zum Thema

Menschliche Parasiten sind Organismen, die auf oder in einem Menschen leben und von diesem Menschen (dem Wirt) Nährstoffe ableiten. Es gibt 3 Arten von Parasiten:

  • Einzellige Protozoen

  • Mehrzellige Helminthen (Würmer)

  • Ektoparasiten wie Krätze und Läuse

Parasitäre Infektionen aufgrund von Protozoen und Helminthen führen weltweit zu einer signifikanten Morbidität und Mortalität. Sie kommen mit hoher Prävalenz in Mittel- und Südamerika, Afrika und Asien, weitaus weniger häufig in Australien, Kanada, Europa, Japan, Neuseeland und den USA vor. Die weitaus größten Auswirkungen haben sie auf die Einwohner verarmter tropischer Regionen mit mangelhafter Hygiene, aber parasitäre Infektionen werden auch in den entwickelten Ländern unter Migranten und Reisenden, die aus endemischen Regionen zurückkehren, angetroffen sowie gelegentlich sogar bei Einheimischen ohne Reiseanamnese, insbesondere solchen mit AIDS oder anderen Bedingungen, die Immundefizienz verursachen.

Viele parasitäre Infektionen werden durch die Kontamination von Lebensmitteln oder Wasser mit Fäkalien übertragen. Am häufigsten kommen sie in Gebieten mit schlechten sanitären und hygienischen Bedingungen vor. Einige Parasiten, wie z. B. der Hakenwurm, können nach einem Kontakt mit kontaminiertem Schmutz die Haut durchdringen, Schistosomen nach einem Kontakt mit kontaminiertem Süßwasser. Andere wie z. B. Malaria werden durch arthropodische Vektoren übertragen. Selten werden Parasiten auch auf parenteralem Wege horizontal durch Bluttransfusionen oder gemeinsam benutzte Nadeln oder vertikal von der Mutter auf den Fetus übertragen.

Einige Parasiten kommen in den USA und anderen entwickelten Ländern endemisch vor. Beispiele sind der Madenwurm Enterobius vermicularis, Trichomonas vaginalis, Toxoplasma gondii und enterische Parasiten wie Giardia intestinalis (auch bekannt als G. duodenalis oder G. lamblia) und Cryptosporidium spp.

Die Charakteristika von protozoalen und helminthischen Infektionen variieren in wichtigen Dingen.

Protozoen

Protozoen sind einzellige Organismen, die sich durch einfache Querteilung vermehren ( Intestinale Protozoen und Mikrosporidien und Extraintestinale Protozoen). Protozoen können sich in ihren menschlichen Wirten zahlenmäßig vermehren und zu einer fulminanten Infektion führen. Von seltenen Ausnahmen abgesehen verursachen Protozoen keine Eosinophilie.

Helminthen (Würmer)

Helminthen (Würmer) sind mehrzellig und haben komplexe Organsysteme. Helminthen können weiter unterteilt werden in

  • Rundwürmer (Nematoden)

  • Plattwürmer (Platyhelminthes), zu denen die Bandwürmer (Zestoden) und Saugwürmer (Trematoden) gehören und

Manche Parasiten haben sich an ein Leben im Darmlumen mit anaeroben Bedingungen adaptiert, andere leben im Blut oder in Geweben mit aeroben Bedingungen.

Im Gegensatz zu Protozoen pflanzen sich Helminthen im Menschen nicht fort, können jedoch aufgrund ihrer Wanderung durch Gewebe zu einer Eosinophilie führen. Die meisten Helminthen weisen einen komplexen Lebenszyklus auf, der während einer gewissen Zeitspanne außerhalb ihres menschlichen Wirtes abläuft. Einige, darunter Strongyloides stercoralis, Capillaria philippinensis und Hymenolepis nana, können ihre Anzahl aufgrund einer Autoinfektion vergrößern (der Nachwuchs infiziert denselben Wirt erneut anstatt abgestoßen zu werden und einen neuen Wirt zu infizieren). Bei einer Strongyloidiasis kann eine Autoinfektion bei immunsupprimierten Personen, insbesondere unter Kortikosteroidtherapie, zu einer lebensbedrohlichen, disseminierten Hyperinfektion führen.

Der Schweregrad einer Wurminfektion korreliert meist mit der Wurmlast, es gibt aber Ausnahmen, z. B. wenn ein einzelner Ascaris durch eine Obstruktion des Pankreasgangs zu einer lebensbedrohlichen Pankreatitis führt. Die Wurmlast hängt vom Ausmaß der Umweltexposition, von parasitären Faktoren und der genetisch bestimmten Immunantwort ab. Zieht eine Person aus einem Endemiegebiet weg, verringert sich die Anzahl adulter Würmer mit der Zeit. Obwohl einige wenige Parasitenarten (z. B. Clonorchis sinensis) über Jahrzehnte hinweg überleben können, weisen viele Arten nur eine Lebensdauer von wenigen Jahren oder weniger auf.

Nematoden sind nichtsegmentierte zylindrische Würmer mit 1mm–1 m Länge. Nematoden weisen im Gegensatz zu Bandwürmern und Egeln eine Körperhöhle auf. Je nach Spezies sind verschiedene Stadien im Lebenszyklus für den Menschen infektiös. Hunderte Millionen Menschen sind mit Nematoden infiziert, die häufigsten sind Ascaris (Askariose), Hakenwürmer und Trichuris (Trichuriasis).

Cestoden (Bandwürmer) als Erwachsene sind multisegmentierte Plattwürmer, denen ein Verdauungstrakt fehlt und die Nährstoffe direkt aus dem Dünndarm des Wirtes aufnehmen. Im Verdauungstrakt des Wirtes können erwachsene Bandwürmer groß werden, bis zu 40 m für eine Art. Zu den Bandwürmern, die Menschen infizieren, gehören der Fischbandwurm (Diphyllobothrium latum), der Rinderbandwurm (Taenia saginata) und der Schweinebandwurm (Taenia solium).

Trematoden (Egel) sind nicht segmentierte Plattwürmer, die die Blutgefäße, den GI-Trakt, die Lunge oder die Leber infizieren. Sie sind normalerweise nicht mehr als ein paar Zentimeter lang. Einige sind jedoch nur 1 mm groß und manche sind 7 cm groß. Beim Menschen werden die meisten Flunkeninfektionen durch Schistosoma sp (Schistosomiasis), Paragonimus westermani (Paragonimiasis) und Clonorchis sinensis (Clonorchiasis) verursacht.

Mikrosporidien

Mikrosporidien sind intrazelluläre sporenbildende Organismen, die früher als Protozoen klassifiziert wurden. Aber genetische Analysen zeigen, dass sie Pilze sind oder eng mit ihnen verwandt sind. Die menschliche Krankheit ist hauptsächlich auf Menschen beschränkt, die AIDS oder andere schwere immunsupprimierende Zustände haben. Die klinischen Manifestationen umfassen Gastroenteritis, fokale Beteiligung der Augen sowie disseminierte Infektion.

Diagnose

  • Mikroskopische Untersuchung

  • Antigen- und DNA-Tests

Methoden zur Diagnose spezifischer parasitärer Erkrankungen sind in Hinweise zu Gewinnung, Verarbeitung, Lagerung und Versand von Proben für die mikroskopische Diagnose von parasitären Infektionen* zusammengefasst.. (s. a. spezifische Infektionen an anderer Stelle im MSD Manual).

Eine parasitäre Infektion sollte bei der Differenzialdiagnose klinischer Syndrome immer dann in Erwägung gezogen werden, wenn Beschwerden bei Einwohnern von oder Reisenden in Gebieten bestehen, in denen die sanitären und hygienischen Standards niedrig sind oder in denen vektoriell übertragene Krankheiten endemisch vorkommen. Zum Beispiel sollte Fieber bei einem Tropenrückkehrer an die Möglichkeit einer Malaria denken lassen. Die Erfahrung zeigt, dass Menschen, die aus endemischen Gebieten in entwickelte Länder eingewandert sind und nach Hause zurückkehren, um Freunde und Verwandte zu besuchen, besonders gefährdet sind. Sie holen häufig keine reisemedizinische Beratung ein oder können sich diese nicht leisten und halten sich mit höherer Wahrscheinlichkeit in Situationen mit hohem Risiko auf als Touristen, die meist im Hotel verbleiben.

Obwohl dies seltener vorkommt, muss auch bei Einwohnern entwickelter Länder, die sich mit charakteristischen Beschwerden vorstellen, an die Möglichkeit einer endemischen oder importierten parasitären Infektion gedacht werden, auch wenn diese nicht im Ausland waren (z. B. Flughafenmalaria).

Anamnestische Angaben, die körperliche Untersuchung sowie Laboruntersuchungen können auf spezifische parasitäre Infektionen hinweisen. Zum Beispiel kommt es häufig zu einer Eosinophilie, wenn Helminthen durch Gewebe wandern, was bei Immigranten oder Tropenrückkehrern auf eine parasitäre Infektion hinweist.

Die Diagnose von parasitären Infektionen basierte einmal auf der Identifizierung von Eizellen, Larven oder erwachsenen Parasiten in Stuhl, Blut, Gewebe oder anderen Proben oder dem Vorhandensein von Antikörpern im Serum. Aber die Diagnose basiert zunehmend auf der Identifizierung von Parasitenantigenen oder molekularen Tests für Parasiten-DNA.

In vielen größeren medizinischen Zentren, tropen- und reisemedizinischen Beratungsstellen und Gesundheitsämtern gibt es Ärzte mit speziellen Kenntnissen in Parasitologie und Tropenmedizin.

Ausführliche Beschreibungen der Diagnosemethoden finden Sie in den CDCs Laboratory Identification of Parasites of Public Health Concern.

Tabelle
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Hinweise zu Gewinnung, Verarbeitung, Lagerung und Versand von Proben für die mikroskopische Diagnose von parasitären Infektionen*

Parasit

Optimale Probe

Details zur Gewinnung

Kommentare

Blut

Plasmodium sp

Dicke und dünne Ausstriche von Kapillarblut (d. h. Finger oder Ohrläppchen, mit einer Einweglanzette) oder 5–10 ml frisches antikoaguliertes Blut (vorzugsweise in Sammelröhrchen, die EDTA enthalten)

Mehrerer Proben sollten während einer akuten Erkrankung gesammelt werden.

Abstriche von Kapillar-oder antikoaguliertem Blut sollten innerhalb von 3 h nach der Entnahme präpariert werden.

.

Geeignete Färbungen sind Wright- oder Giemsa-Färbung.

Objektträger müssen sauber und fettfrei sein.

Babesia sp

Dicke und dünne Ausstriche (sog. "dicker Tropfen") wie für Plasmodium sp

Sammeln wie bei Plasmodium sp.

Geeignete Färbungen sind Wright- oder Giemsa-Färbung.

Morphologie ähnelt Plasmodium sp-Ringformen, aber ohne Pigment und Gametozyten. Sporen sind symptomatisch für Babesia sp, kommen aber selten vor.

Trypanosoma sp

Dünne Abstriche von Kapillarblut oder 5–6 ml von antikoaguliertem Blut

Kapillarblut oder antikoaguliertes Blut wird gesammelt. Abstrich auf Glasplättchen.

Verschiedene Anreicherungstechniken werden verwendet, um die Sensitivität zu verbessern.

Motile Trypanosomen sind in nassen Zubereitungen zu sehen; Giemsa- (oder Feld) Färbung wird verwendet, um sie in festen Vorbereitungen zu identifizieren.

Filarienwürmer

Dicke und dünne Abstriche von 1 ml antikoaguliertem Blut; wenn die erste Probe negativ ist, 5-10 ml, konzentriert durch Zentrifugation oder Filtration.

Microfilariae von Wuchereria bancrofti und Brugia malayi: Blutabnahme zwischen 10 Uhr abends und 2 Uhr morgens.

Loa loa, Dipetalonema perstans, und Mansonella ozzardi: Blutabnahme zwischen 10 Uhr vormittags und 6 Uhr abends.

Verwenden Sie Giemsa- oder Hämatoxylin-Eosin-Färbung direkt oder, für eine größere Empfindlichkeit, nach der Konzentration in 2% Formalin (Knott-Technik) oder nach Filtration durch eine Nucleopore®-Membran.

Knochenmark, andere retikuloendothelialen Gewebe oder Liquor

Leishmania sp

Aspirate von Knochenmark, Milz, Leber oder Lymphknoten oder Abstriche vom Buffy Coat

Ausstrich auf Objektträger.

Verwenden Sie Giemsa-, Wright-Giemsa oder Hämatoxylin-Eosin-Färbung.

Naegleria

Acanthamoeba

Balamuthia

Frischen Liquor cerebrospinalis

Aseptische Abnahmetechniken sind erforderlich.

Proben sollten so schnell wie möglich untersucht werden.

Die Untersuchung sollte mittels Licht oder Phasenkontrastmikroskopie erfolgen.

Parasiten können durch ihre Bewegungen erkannt werden; sie können mit Giemsa fixiert und gefärbt oder kultiviert werden.

Trypanosoma brucei gambiense und rhodesiense

Aspirate von Lymphknoten oder Schanker

Frischer Liquor cerebrospinalis

Aseptische Abnahmetechniken sind erforderlich.

Benutzen Sie "Wet Mount", um bewegliche Parasiten zu identifizieren, oder fixieren und färben Sie sie mit Giemsa oder Feld-Färbung vor oder nach der Konzentration durch Zentrifugation.

Duodenalaspirate oder jejunal Biopsie

Giardia sp

Cryptosporidium sp

Cystoisospora sp

Cyclospora sp

Mikrosporidien

Strongyloides sp

Zwölffingerdarm-Aspirat oder Jejunalbiopsieprobe

Untersuchen Sie Aspirationen sofort oder fixieren und färben Sie. Führen Sie eine histopathologische Untersuchung von Biopsien durch.

Verwenden Sie eine feuchte Aspirathalterung, um die Eizellen oder Strongyloides-Larven zu identifizieren. Für die Diagnose können mehrere Färbungen verwendet werden (siehe Kot unten für Details).

Die Transmissionselektronenmikroskopie ist der Goldstandard für den Nachweis von Mikrosporidien.

Rektale Biopsie

Schistosoma mansoni

Schistosoma japonicum

Rektale Biopsieproben von der Dorsalfalte, ca. 9 cm vom Anus

Für die histopathologische Untersuchung sollte ein Segment fixiert und für eine erhöhte Sensibilität zwischen die Objektträger gedrückt werden.

Die Differenzierung basiert auf der Morphologie der Wurmeier.

Sigmoidoskopie (Darmspiegelung)

Entamoeba histolytica

Frische Abstriche mit einer Kürette oder einem Volkmann-Löffel, ein mit einem chirurgischen Instrument entferntes Stück Schleimhaut oder ein Aspirat einer Läsion entnommen mit einer 1-ml großen serologischen. Pipette mit einem Gummiball (Wattestäbchen sind ungeeignet)

Untersuchen Sie die Probe sofort oder nach der Fixierung und Färbung.

Verwenden Sie feuchte Reittiere oder fest eingefärbte Objektträger (z.B. mit Trichrom-Färbung) zum Nachweis von Trophozoiten und Zysten. Stuhl sollte auf E. histolytica-Antigen untersucht werden, dieser Test ist empfindlicher und kann E. histolytica von nicht-pathogenem Ameba unterscheiden.

Kot

Entamoeba histolytica

Entamoeba dispar

Entamoeba moshkovski

Andere Amöben

Mehrere frisch ausgeschiedene Stühle (≥ 3) sollten am Vormittag gesammelt werden

Proben von ungeformten oder flüssigem Stuhl müssen innerhalb von 15 min untersucht werden.

Geformter Stuhl muss bis zur Untersuchung gekühlt werden. Konservierung in Formalin oder einem anderen Fixiermittel.

Bei Zysten sollen Nativpräparate und permanent gefärbten Objektträger (z. B. Trichromfärbung) sowie Anreicherungstechniken verwendet werden.

Stuhl sollte auf das Adhärenzlektinantigen von E. histolytica untersucht werden, das empfindlicher ist und E. histolytica von den nichtpathologischen E. dispar, E. moshkovski und anderen nicht-pathogenen Organismen unterscheiden kann.

Giardia sp

Multiple frisch ausgeschiedene Stuhlproben (≥ 3) sollten vormittags jeden zweiten Tag gesammelt werden.

Untersuchen Sie frisch oder konservieren Sie in Formalin oder einem anderen Fixateur. Trophozoiten können auch in Duodenalaspiraten nachgewiesen werden.

Untersuchen sie direkte und konzentrierte Proben. Zysten werden normalerweise in feuchten Halterungen beobachtet und Trophozoiten werden in fixierten Trichrome-gefärbten Objektträgern. Tests für fäkale Antigene sind empfindlicher.

Cryptosporidium sp

Mehrere frisch ausgeschiedene Stuhlproben (≥ 3) sollen täglich oder jeden zweiten Tag gesammelt werden.

Frische Proben müssen gekühlt und untersucht werden oder in Formalin oder einem anderen Fixiermittel konserviert werden.

Sie müssen mit Vorsicht behandelt werden, da frische und mit Dichromat konservierte Stühle infektiös sind.

Duodenalaspirate oder jejunal Biopsie können diagnostisch sein.

Nativpräparate sollen mit Licht-, Differenzialinterferenzkontrast-, Phasenkontrast- und Immunfluoreszenzmikroskopie untersucht werden.

Proben sollten mit modifiziertem säurefestem oder modifiziertem Safranin gefärbt werden. Tests für fäkale Antigene sind empfindlicher.

Cystoisospora sp

Mehrere frisch ausgeschiedene Stuhlproben sollten täglich oder jeden zweiten Tag gesammelt werden.

Untersuchen Sie frisch oder konservieren Sie in Formalin oder einem anderen Fixateur. Anreicherungstechniken steigern die Sensitivität.

Oozysten können in Nativpräparaten durch Hellfeld-Differenzial-Interferenz-Kontrast oder Epifluoreszenzmikroskopie visualisiert werden. Fixierte Proben sollen mit modifizierter säurefester Farbe gefärbt werden. Wenn der Stuhlgang negativ ist, kann die Untersuchung des Zwölffingerdarmaspirats oder einer Biopsie diagnostisch sein.

Cyclospora spp

Mehrere frisch ausgeschiedene Stuhlproben sollten täglich oder jeden zweiten Tag gesammelt werden.

Die Proben sollten gekühlt und frisch oder gefroren untersucht oder in 10% Formalin und 2,5% Kaliumdichromat konserviert werden. Verschiedene Labortests erfordern unterschiedliche Konservierungstechniken. Anreicherungstechniken erhöhen die Sensitivität.

Nativpräparate sollen mit Licht-, Hellfeld-Differenzial-Interferenz-Kontrast-, Phasenkontrast und/oder UV-Fluoreszenzmikroskopie untersucht werden. Oozysten sind unter UV-Licht autofluoreszierend. Feste Proben können mit modifizierter säurefester Farbe oder modifiziertem Safranin gefärbt werden. Ein Sporulationsassay kann Cyclospora von blaugrünen Algen unterscheiden.

Mikrosporidien

Mehrere Stuhlproben sollten täglich oder jeden zweiten Tag gesammelt werden.

Dünndarmbiopsien können notwendig sein, wenn Stuhlproben negativ sind.

Proben, die mit Chromotropsäure-Methoden gefärbt werden, werden am häufigsten verwendet. Chemofluoreszierende Substanzen wie Calcifluor können auch zur schnellen Identifizierung verwendet werden.

Elektronenmikroskopie ist die sensitivste Methode und wird zur Differenzierung eingesetzt.

Trichuris sp

Ascaris sp

Hakenwürmer

Strongyloides sp

Bandwürmer

Egel

Multiple gesammelte Stuhlproben (bis zu 7 werden für Strongyloides benötigt)

Probe kühl lagern und frisch untersuchen oder in 10% igem Formalin fixieren und mit Formalin-Ethylacetat-Sedimentation konzentrieren.

Aktive Larven werden mit Strongyloides gesehen, Eizellen mit anderen Darmhelminthen.

Bei Strongyloides ist der Agarplattentest sensitiver als die Untersuchung auf Wurmeier und Parasiten. Wenn der Stuhl bei Umgebungstemperatur gehalten wird, können Strongyloides-Larven ähnlich aussehen wie geschlüpfte Hakenwurmlarven.

Enterobius sp

Wurmeier sollten aus dem Bereich um den Anus auf einem Tesastreifen gewonnen und auf Glasobjektträger gelegt werden.

Gewinnung um den Bereich des Anus morgens vor dem Stuhlgang oder dem Bad.

Enterobius-Eizellen werden gelegentlich in einer Stuhlprobe oder in vaginalen Inhalten, die während eines Papanicolaou-Tests gewonnen wurden, gesehen. Erwachsene Würmer können auf der perianalen Region oder in der Vagina beobachtet werden.

Sputum oder Aspirate von Atemwegen

Paragonimus sp

Frisches Sputum

Proben sollten so schnell wie möglich untersucht oder für eine spätere Untersuchung konserviert werden.

Anreicherungstechniken können notwendig sein. Gelegentlich sind Eizellen in pleuraler Flüssigkeit vorhanden.

Strongyloides sp (Hyperinfection)

Sputum, jegliches aspiriertes Material, durch BAL oder aus drainiertem Material gewonnene Flüssigkeit

Proben sollten so schnell wie möglich untersucht oder für eine spätere Prüfung konserviert werden.

Aktive Larven können in Nativpräparaten gesehen oder fixiert und mit Giemsa gefärbt werden.

Lungenbiopsie

Paragonimus sp

Offene Lungenbiopsie oder

perkutane Biopsie mit Fluoroskopie oder CT

Gewinnung und Aufbewahrung mit sterilen Behältern oder steriler Kochsalzlösung. Fix und Fleck mit Giemsa oder Hämatoxylin-Eosin.

Ova und adulte Egel können identifiziert werden.

Haut

Onchocerca volvulus

Bei Patienten, die sich in Afrika infiziert haben, Hautbiopsien vom Oberschenkel, Gesäß, oder Beckenkamm

Bei Patienten, die sich in Lateinamerika infiziert haben, Hautbiopsien vom Kopf, Schulterblatt oder Gesäß

Bei Hautbiopsien sollte die Haut mit Alkohol desinfiziert und eine 25-Gauge-Nadel direkt unter der Epidermis eingeführt werden. Diese wird dann angehoben und ein kleines Stück Gewebe mit einem Skalpell herausgeschnitten oder man verwendet ein Einmalinstrument für eine Punchbiopsie. Bei sachgemäßer Durchführung treten kaum wesentliche Blutungen auf. Untersuchen Sie frisch oder fixieren Sie in Methanol und färben Sie mit Giemsa oder Hämatoxylin-Eosin.

Untersuchen Sie die in Kochsalzlösung suspendierte Probe auf bewegliche Mikrofilarien, die aus dem Hautschnitt wandern. Mikrofilarien können in Gewebeschnitten auftreten.

Leishmania sp

Biopsie eines nichtulzerierten Bereiches der Läsions- und Berührungspräparate oder Gleitabstriche

Suchen Sie nach Amastigoten in Giemsa-gefärbten Berührungen oder Ausstrichen und in Hämatoxylin-Eosin-gefärbten Biopsien.

Leishmania amastigotes sind morphologisch nicht von denen des Trypanosoma cruzi zu unterscheiden. Leishmania kann aus Hautbiopsien kultiviert werden, aber das Wachstum in vitro kann Wochen dauern. Molekulare Tests für Leishmania-DNA sind verfügbar.

Urogenitale Sekrete oder Biopsie

Trichomonas sp

Sterile Tupfer von Vagina-, Harnröhren- oder Prostatasekret in einem Röhrchen mit einer kleinen Menge von steriler Kochsalzlösung.

Weibliche Patienten sollen für 3–4 Tage vor Entnahme der Probe nicht duschen.

Die Probe sollte so schnell wie möglich an das Labor geschickt werden.

Die Identifizierung von beweglichen Erregern im Nativpräparat ist die schnellste Nachweismethode. Der direkte fluoreszierende Antikörper gegen Parasiten ist empfindlicher; die Kultur ist am empfindlichsten, dauert aber 3–7 Tage.

Schistosoma haematobium, gelegentlich S. japonicum

Frischer Urin oder Biopsie aus der Umgebung des Trigonum

Die empfohlene Zeit zur Urinsammlung ist zwischen 12 und 15 Uhr nachmittags. Zentrifugation erhöht die Detektion.

Ova kann in nassen Halterungen von Urin oder in Biopsieproben aus der Blase gesehen werden.

BAL = bronchoalveoläre Lavage; EDTA = Ethylendiamintetraessigsäure; UV = Ultraviolett.

Basierend auf der CDC: Laboratory Identification of Parasitic Diseases of Public Health Concern, die detaillierte Anweisungen enthält.

Parasiten des GI-Trakts

Verschiedene Stadien von Protozoen und Helminthen, die den Gastrointestinaltrakt infizieren, werden charakteristischerweise im Stuhl ausgeschieden. Der routinemäßige Nachweis erfordert die Untersuchung von Stuhlproben, vorzugsweise von dreien, die an verschiedenen Tagen genommen wurden, da die Ausscheidung variieren kann. Die Sensitivität von Laboruntersuchungen für Eizellen und Parasiten ist insgesamt gering, sodass bei dringendem klinischem Verdacht eine empirische Therapie in Betracht gezogen werden sollte. Sensitive und spezifische Assays sind jetzt verfügbar, um Antigene von G. intestinalis, Cryptosporidium spp und Entamoeba histolytica im Stuhl zu erkennen. Obwohl teuer, sind molekulare Tests für G. intestinalis, Cryptosporidium spp, E. histolytica und Cyclospora sind in PCR-basierten Screens für enterische bakterielle, virale und parasitäre Pathogene in Stuhlproben enthalten (siehe Tabelle: Serologische und molekulare Tests für parasitären Infektionen).

Frisch ausgeschiedener Stuhl, der nicht mit Urin, Wasser, Schmutz oder Desinfektionsmitteln kontaminiert wurde, sollte innerhalb von einer Stunde in das Labor gelangen; ungeformter oder wässriger Stuhl enthält mit höherer Wahrscheinlichkeit bewegliche Trophozoiten. Wird er nicht sofort untersucht, sollte Stuhl gekühlt, aber nicht gefroren werden. Ein Teil des frischen Stuhls sollte auch fixiert werden, um gastrointestinale Protozoen zu konservieren. Mittels Anreicherungstechniken kann die Sensitivität der Untersuchung erhöht werden. Durch anale Tesafilmpräparate oder Abstriche können Madenwurm- oder Bandwurmeier gewonnen werden. Bei Verdacht auf Strongyloidiasis sollte frischer Stuhl zum Nachweis von Larven auf eine Agar-Platte ausgestrichen und inkubiert werden. Antibiotika, Röntgen-Kontrastmittel, Abführmittel und Antazida können den Nachweis von Eizellen und Parasiten über mehrere Wochen hinweg behindern.

Wenn bei Patienten mit persistierenden gastrointestinalen Beschwerden und Verdacht auf Amöbiasis routinemäßige Stuhluntersuchungen negativ geblieben sind, sollte eine Sigmoidoskopie oder Koloskopie in Erwägung gezogen werden. Sigmoidoskopisch gewonnene Proben sollten mit einer Kürette oder einem scharfen Löffel entnommen werden (Baumwolltupfer sind nicht geeignet) und sofort der Mikroskopie zugeleitet werden. Zur Diagnosestellung bei Verdacht auf Kryptosporidiose und Mikrosporidiose können Duodenalaspirate oder Dünndarmbiopsien notwendig sein.

Serologische Tests für parasitäre Infektionen

Einige Parasiten können durch serologische Tests nachgewiesen werden (siehe Tabelle: Serologische und molekulare Tests für parasitären Infektionen).

Tabelle
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Serologische und molekulare Tests für parasitären Infektionen

Infektion

Antikörper

Antigen oder DNA/RNA

Protozoen

Afrikanische Trypanosomiasis (Erreger der Westafrikanischen Schlafkrankheit)

CATT = Card Agglutination Trypanosomiasis Test

Amöbiasis

EIA, IHA

Schemel: Antigen (EIA), PCR

Babesiose

IFA

Blut: PCR

Chagas-Krankheit

IFA, EIA, RIPA

Blut, Gewebe oder Liquor: PCR

Kryptosporidiose

Schemel: Antigen (EIA), PCR

Cyclosporiasis

PCR

Giardiasis

Schemel: Antigen (EIA), DFA, PCR

Leishmaniose

IFA, EIA (für viszerale , aber nicht kutane Leishmaniose)

Blut oder Gewebe: PCR

Malaria

IFA

Blut: ICG für Antigen (Schnelltest), PCR

Mikrosporidiose

Stuhl oder Darmgewebe: IFA, IIF, TEM, PCR

Toxoplasmose

IFA, EIA (IgG und IgM)

Gewebe oder Blut: PCR

Rundwürmer

Filariasis

Blut: Antigen (ICG; nicht erhältlich in den USA.)

Strongyloidiasis

EIA, IFA, IHA

Trichinellose

EIA

Toxocariasis

EIA

Egel

Paragonimiasis

CF, IB, EIA

Schistosomiasis

FAST-ELISA, IB

Bandwürmer

Zystizerkose

IB (Serum oder Liquor), EIA

Serum oder CSF: Antigen (wird verwendet, um Reaktionen auf die Therapie zu bewerten; nicht empfindlich genug für die Diagnose)

CSF: PCR

Echinococcus

EIA, IHA, IFA, IB

CATT = "Card Agglutination Trypanosomiasis Test" für Trypanosoma brucei gambiense; CDC = Centers for Disease Control and Prevention; CF = Komplementbindung, DFA = Direkte Fluoreszenzantikörper; EIA = "Enzym-Immunoassay"; FAST-ELISA = "Falcon assay screening test enzym-linked immunsorbent assay"; IB = "Immunoblot"; ICG = "Immunochromatographic assay" IFA = Indirekter Fluoreszenz-Antikörper-Test; IHA = Indirekter Hämagglutinationstest; IIF = Immunfluoreszenztest; PCR = Polymerasekettenreaktion; RIPA = radioimmunoprecipitation assayTEM = Transmissions- electronische Mikroskopie.

Beachten: Einige Parasiten-Antigen und Nachweis-Kits sind im Handel erhältlich. Informationen zu in Deutschland erhältlichen spezifischen Tests und zu Referenzlaboratorien sind über das RKI oder ihr mikrobiologisches Labor zu erfragen. Molekulare Tests (z. B. PCR) für DNA sind verfügbar, um enterische Protozoen in Stuhlproben nachzuweisen, aber sie sind teuer. Molekulare Tests für eine Reihe anderer Parasiten sind in Referenz- oder Forschungslaboratorien erhältlich.

Therapie

  • Verschiedene Behandlungen je nach spezifischer Infektion

Größere medizinische Zentren und Einrichtungen des öffentlichen Gesundheitsdienstes sowie tropen- und reisemedizinische Kliniken, auf der CDC web site, Institute und Beratungseinrichtungen bieten fachliche Hilfe bei der Therapie von Parasitosen an. Weiterhin gibt es viele infektiologische und tropenmedizinische Lehrbücher sowie als Übersicht "The Medical Letter on Drugs and Therapeutics" oder die Steckbriefe seltener Infektionserkrankungen auf den Seiten des RKI (www.rki.de).

Medikamente gegen ungewöhnliche parasitäre Infektionen können oft über den CDC Drug Service oder den Hersteller bezogen werden.(Anmerkung der Redaktion: Medikamentenservice der CDC Drug Service nur für die USA.)

Vorbeugung

Trotz bedeutender Investitionen und Forschungsbemühungen sind bisher noch keine Impfstoffe zur Prophylaxe humaner parasitärer Infektionen verfügbar. Die Prävention basiert daher auf der Vermeidung einer Exposition.

Eine Übertragung der meisten Darmparasiten kann verhindert werden

  • Sachgerechte Sanitärverhältnisse/Entsorgung von Fäkalien

  • Angemessenes Garen von Speisen

  • Bereitstellung von sauberem Trinkwasser

Für den international Reisenden ist der beste Rat: „Brate es, koche es, schäle es oder vergiss es.“ Werden diese Empfehlungen befolgt, kann dadurch das Risiko intestinaler parasitärer Infektionen sowie das Risiko einer bakteriellen oder viralen Gastroenteritis reduziert, nicht aber eliminiert werden. Fleisch, insbesondere Schweinefleisch, und Fisch, insbesondere diverse Süßwasserfische, sollten vor dem Verzehr gut durchgegart werden. Weitere Maßnahmen, insbesondere zur Prävention einer Toxoplasmose, bestehen darin, Katzenabfallbehälter aus Bereichen zu entfernen, die der Herstellung von Lebensmitteln dienen. In Schistosomen-Endemiegebieten sollte man nicht in Süßwasserseen, -flüssen oder -strömen schwimmen und in Gebieten mit Vorkommen von Hakenwürmern nicht barfuß laufen oder auf dem nackten Hintern sitzen.

Die Prävention von Malaria und viele andere vektorübertragene Krankheiten beinhaltet

  • Tragen von langärmelige Hemden und langen Hosen

  • Auftragen von Diethyltoluamid (DEET)-haltigen Insektenschutzmitteln auf exponierte Haut und Permethrin auf Kleidung

  • Verwendung von mit Permethrin oder anderen Insektiziden imprägnierten Fensterscheiben, Klimaanlagen und Moskitonetzen.

  • Bewohner von nicht-endemischen Gebieten, die in Regionen reisen, in denen Malaria übertragen wird, nehmen prophylaktische Malariamedikamente

Reisende sollten in ländlichen Gebieten Lateinamerikas nicht in Lehmziegelbauten schlafen, wo es durch Raubwanzen („reduviid bugs“) zur Übertragung der Chagas-Krankheit kommen kann ( Chagas-Krankheit : Prävention). In den Regionen Afrikas mit endemischem Vorkommen der Schlafkrankheit sollten Reisende Kleidung in hellen Farben vermeiden und langärmlige Hemden und Hosen tragen, um Stiche der Tsetse-Fliege zu vermeiden ( Afrikanische Trypanosomiasis : Prävention).

Länderspezifische Reiseempfehlungen sind beim CDC: Travelers' Health, from the CDC: Travel Health and the Yellow Book, and the Yellow Book"CDC Health Information for International Travel 2016".

Weitere Informationen

Zur Patientenaufklärung hier klicken.
HINWEIS: Dies ist die Ausgabe für medizinische Fachkreise. LAIEN: Hier klicken, um zur Ausgabe für Patienten zu gelangen.
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